招生方案
APP下载

扫一扫,立即下载

医学教育网APP下载
手机网
医学教育网手机网

手机网二维码

微 信
医学教育网微信公号

官方微信

搜索|
您的位置:医学教育网 > 医学百科类 > 医药 > 正文

耐甲氧西林金黄色葡萄球菌MRSA检测

2012-12-07 20:08 医学教育网
|

由于MRSA的不均一耐药性,给其检测带来一定的困难。MRSA的检出率受孵育温度、时间、培养基的pH和NaCl的浓度、菌液的数量等多种因素的影响。因此,目前还没有一种最佳的检测方法。

1 纸片扩散法(K-B法)

平皿中MH琼脂厚度为4 mm,菌液调至0.5麦氏浊度,涂沫于上述平板,甲氧西林含量5 μg/片,35°C孵育24 h,抑菌圈≤11 mm为耐药,≥17 mm为敏感,由于MRSA通常对其它耐酶半合成青霉素也耐药,因此美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)推荐用苯唑西林来代替检测MRSA。苯唑西林在贮存过程中药效不易降低,且对不均一耐药性检测效果更好,所以国内多数实验室都采用苯唑西林,苯唑西林含量为1 μg/片,抑菌圈≤10 mm为耐药,≥13 mm为敏感,11~12 mm为中介。质控菌株为金黄色葡萄球菌ATCC 29213(耐药菌株),金黄色葡萄球菌ATCC 25923(敏感菌株)。纸片扩散法最大优点是快速、简便、价格便宜,易被检验人员接受。在合适的抗生素及培养温度、菌液的浓度、培养基厚度等条件下,检测MRSA是可行的。但Leneastre等[9]对K-B法和特异性mec A基因DNA片段法鉴定MRSA的结果进行了比较,发现在49株用K-B法鉴定为MSSA的菌株,特异性mec A基因DNA片段法鉴定却有11株含mec A基因;59株用纸片法鉴定为典型MRSA的菌株,有10株却没有特异性mec A基因,这两种方法大约有18%~20%的差异。Chipman[10]等研究也表明以mec A基因检测法为参考方法时,纸片扩散法的符合率为88.2%。这可能与纸片法中的琼脂中没有NaCl成份,一些菌株的耐药性得不到完全表达有关。因此,为提高纸片扩散法检测MRSA的可靠性,最好在MH琼脂中加入40 g/L NaCl。

2 肉汤稀释(MIC)法

美国疾病控制中心(CDC)推荐用MH肉汤培养基加NaCl至20 g/L浓度,同时加入Ca,Mg离子,将苯唑西林进行倍比稀释,从0.125~16 μg/ml,菌浓度为104/ml,35°C孵育24 h,MIC<2 μg/ml为敏感,>4 μg/ml为耐药,该法检出率可达95%,但操作较繁琐。

3 琼脂稀释(MIC)法

用含20 g/L NaCl的MH琼脂将苯唑西林倍比稀释为12个不同浓度并浇注平皿。苯唑西林量终浓度为0.125~256 μg/ml。再将菌液(0.5麦氏浊度)点种于含药平皿,35°C孵育24 h。该法适用于大量菌株的MRSA检测,结果容易判断,重复性好,但耗时,费力。

4 琼脂筛选法

这是1997年NCCLS推荐的MRSA的确证试验,即MH培养基加NaCl(40 g/L)加苯唑西林(6 μg/ml),将菌液(0.5麦氏浊度)点种或画线35°C孵育24 h,只要平皿有菌生长,即使一个菌落也是MRSA,该法敏感度为100%,常用作校正其它方法的标准,尤其适用于检测抑菌圈直径处于中介度的金黄色葡萄球菌。

5 浓度梯度(Etest)法

是1988年AB Biodisk公司推出,在含20 g/L NaCl的MH琼脂平板上,贴上苯唑西林的试条,菌液调至0.5~1麦氏浊度,35°C孵育24 h,直接读取MIC值。MIC<2 μg/ml为敏感,>4 μg/ml为耐药。Etest法结合了纸片扩散法和肉汤稀释法的优点,长塑料条含有连续的呈指数梯度变化的苯唑西林(0.016~256 μg/ml),故在检测低水平或中等程度耐药的MRSA时结果更为准确。Novak[11]等报道,用Alamar法和Etest法对127株MRSA的检测比较,两者结果相关较高,用Etest法检测127株MRSA,其中93株MIC>256 μg/ml,28株在6~256 μg/ml,检出率达96%,Etest法具有精确、可靠、稳定性好的特点,但缺点是价格昂贵。

6 自动化药敏检测

目前有Vitek系统、ATB系统、MicroScan系统、Sensiter ARIS等。将菌液稀释后注入药敏板或孔内,然后通过检测菌液浊度,荧光指示剂的荧光强度或荧光底物的水解反应来判读结果。其优点是快速,但有时对生长缓慢或延迟表达耐药性的MRSA,在3~4 h内难以达到检测水平,容易漏检或误报MRSA。

7 DNA探针杂交

上述的方法都是检测MRSA耐药表型的方法。MRSA根据其耐药频率可分为1、2、3、4类,其耐药频率为10-7、10-4、10-3以及10-1[12]。上述常规的检测方法对于3、4类MRSA一般不存在问题,但对于低频率的1、2类则很容易造成漏检。因此,对于低水平耐药或临界水平耐药的MRSA,应选择特异性高的分子生物学方法来检测。DNA探针杂交是用特异性的mec A DNA片段经地高辛标记,与可疑菌株进行杂交,有学者报告[13],DNA探针仅与MRSA DNA杂交,与MSSA DNA无杂交带,其特异性高于琼脂稀释法,敏感性高于肉汤稀释法,而且可直接用于临床标本,无需先进行细菌分离培养,但探针较贵,保存期较短。

8 PCR技术

本世纪80年代末期,国外就有人用聚合酶链反应(PCR)来检测PBP2a的mec A基因。它是根据金黄色葡萄球菌TK 784的mec A基因DNA序列[14]设计一引物,再裂解提取被测菌的DNA,在一定条件下进行扩增,经琼脂糖电泳后在紫外灯下观察有无与阳性对照菌株(金黄色葡萄球菌ATCC29213)相同的区带。PCR具有较高的灵敏度,只要被测菌有微量的的基因,即出现阳性结果,因此常作为检测MRSA的参考方法。陈秀枢实验表明[14],金黄色葡萄球菌耐苯唑西林的耐药水平与mec A基因有较好的相关性。MIC>4 μg/ml的22株菌均检出mec A基因。由于PCR很灵敏,有时会因实验室的污染而出现假阳性,为使PCR具有更高的可靠性,必须对其扩增产物进行探针杂交或测序以提高特异性[15]。而有一些耐药基因是沉默基因,不表达mec A基因产物,有时会得出假耐药结论,所以分子生物学方法并非100%的敏感和特异,加上该法前期处理操作繁琐,且需要一定的设备,仅在可疑或特殊情况下做此试验。耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)感染的流行概况 自从1961年英国发现MRSA后,在欧美及亚洲一些国家相继报道了MRSA所致的院内感染。从60年代后期到80年代,MRSA感染率大大增加。美国NNIS报道1975年182所医院MRSA占金黄色葡萄球菌感染总数的2.4%,1991年上升至24.8%,其中尤以500张床以上的教学医院和中心医院为多,因为这些医院里MRSA感染的机会较多,耐药菌株既可由感染病人带入医院,也可因滥用抗生素在医院内产生[16]。欧洲1993年1417家医院ICU分离的MRSA达60%[17]。而日本Kansai医科大学附属医院MRSA的分离率1993年达到41%。国内在70年代发现有MRSA,近几年MRSA的检出率正在逐年上升,上海1978年在200株金黄色葡萄球菌中MRSA只占5%,1988年上升至24%,1996年激增至72%[18]。天津1988年调查MRSA分离率为47%[19],北京医科大学附属医院1996年分离MRSA达58.3%[20],山东淮坊市1996年在三家医院的婴儿室分离出金黄色葡萄球菌198株,其中MRSA为112株(56.5%)[21]。武汉同济医科大学附院1992年分离MRSA就达79.6%[22]。MRSA感染多发生于免疫缺陷者,大面积烧伤,大手术后患者,长期住院及老年患者,MRSA极易导致感染的流行和暴发。MRSA传播主要通过医护人员的手,在患者、医护人员、患者间播散,另外,衣物、敷料等物品可携带MRSA,促进MRSA在院内的流行,病人一旦感染或携带MRSA,该菌可存在于患者身上达数月之久。

医师资格考试公众号

编辑推荐
考试辅导
回到顶部
折叠