血液涂片的制作与染色是临床医学检验技士考试需要了解的知识点，医学教育|网搜集整理了相关内容，希望对广大复习备考的考生有所帮助。

血液涂片的制作与染色：

做好血液涂片和正确染色是血液细胞检验的重要步骤，涂片和染色效果的好坏直接关系着检验的结果，必须以认真负责的态度注意操作过程的每一个环节。

一．玻片的清洁

1．一般清洗法

（1）将玻片放入肥皂或洗衣粉水中煮沸20分钟。

（2）用热水将肥皂和血膜等污物洗去，再用自来水反复冲洗，最后再用蒸馏水冲洗3～5次。必要时再置95%乙醇中浸泡1小时，然后擦干或烘干备用。新玻片常有游离碱质，因此应用清洁液或10%盐酸浸泡24小时，然后分别用自来水及蒸馏水彻底洗涤。

2．油污载片清洗法

（1）清洗液

甲液：10g/L的过锰酸钾水溶液，乙液：25g/L的草酸水溶液。

（2）清洗方法：将用过的玻片投入甲液数小时，取出后再投入乙液数小时，然后用自来水和蒸馏水冲洗干净后再置95%乙醇中，以毛巾擦干净即成。久用后甲液可出现泥沙样沉淀，乙液有乳白色沉淀，可用棉花滤去再用，如乙液褪色应重新配置。

二．血涂片制作

取末梢血1滴，置载玻片一端，取另一边缘光滑的推片，放在血滴前面慢慢后移，接触血滴后稍停。血液即沿推片散开，将推片与载片保持30～45°角，向前平稳均匀推动推片，载片上便留下一层薄血膜。血涂片制成后，立即在空气中挥动，使其迅速干燥，以免血细胞变形。血膜干燥后，用铅笔在血膜的一侧写上病人姓名或编号。

一张良好的血片，厚薄要适宜，头体尾要明显，细胞分布要均匀，膜的边缘要整齐，并留有一定的空隙。

涂片时，血滴愈大，角度愈大，推片速度愈快则血膜愈厚，反之血膜愈薄。太薄的血膜片50%的白细胞集中于边缘或尾部，不利于白细胞分类。如果血膜分布不匀，主要是推片不整齐，用力不均匀，载片不清洁所致。

三．染色

1．瑞氏染色法（Wrightstaining）

本法的特点是将固定和染色合并在一起进行，手续简便，染色时间短，对白细胞中的特异性颗粒着色较好，但对核的着色较差。

（1）原理：瑞氏染粉是由伊红和美蓝混合后组成的一种中性盐染料。伊红是一种酸性染料，为伊红钠盐，其有色部分为阴离子；美蓝是一种碱性染料，为氯化美蓝，有色基团为阳离子。如以M+代表美蓝，以E-代表伊红，其反应式为：

M+Cl-+Na+E→ME↓+NaCl

美蓝；伊红；伊红化美蓝（瑞士染料）

将适量的ME溶解在甲醇中，即成为瑞氏染液。甲醇的作用可使ME溶解，解离为M+和E－，这两种有色离子可以选择性地吸附血细胞内的不同成分而着色。甲醇的另一个作用是有很强的脱水作用，可将细胞固定为一定形态，当细胞发生凝固时，蛋白质被沉淀为颗粒状或者网状结构，增加细胞结构的表面积，提高对染料的吸附作用，增强染色效果。

细胞的着色过程是染料透入被染物并存留其内部的一种过程，此过程既有物理吸附作用，又有化学亲和作用。各种细胞及细胞的各种成分由于其化学性质不同，对各种染料的亲和力也不一样，因此，在血片上可以见到不同的着色。细胞中碱性物质与酸性染料伊红结合染成红色，因此该物质又称为嗜酸性物质。如，红细胞中的血红蛋白，嗜酸性粒细胞胞浆中的颗粒为碱性物质，这些物质可与伊红结合染成红色。细胞中的酸性物质可与染液中的碱性染料美蓝结合染成蓝色，该物质又称嗜碱性物质，如：嗜碱性粒细胞中的颗粒为酸性物质可与碱性染料美蓝结合染成蓝色。细胞核主要由脱氧核糖核酸和强碱性的组蛋白、精蛋白等形式的核蛋白所组成，这种强碱性的物质与瑞氏染液中的酸性染料伊红结合成红色，但因为核蛋白中还有少量的弱酸性物质，它们又与染料中的碱性染料美蓝作用染成蓝色。但因含量太少，蓝色反应极弱，故核染色呈现紫红色。幼稚红细胞的胞浆和细胞核的核仁中含有酸性物质，它们与染液中的碱性染料美蓝有亲和力，故染成蓝色。当细胞含酸、碱性物质各半时，它们既与酸性染料作用，又与碱性染料作用，染成红蓝色或灰红色，即所谓多嗜性。当胞浆中的酸性物质消失时，只与染液中的伊红起作用，则染成红色，即所谓正色性。

（2）试剂

①瑞氏染液

瑞氏染料（粉）1．0g

纯甲醇（AR级以上）600．0ml

将全部染料放入乳钵内，先加少量甲醇慢慢地研磨（至少半小时），以使染料充分溶解，再加一些甲醇混匀，然后将溶解的部分倒人洁净的棕色瓶内，乳钵内剩余的未溶解的染料，再加入少许甲醇细研，如此多次研磨，直至染料全部溶解，甲醇用完为止。密闭保存。

②磷酸盐缓冲液（pH6．4～6．8）

磷酸二氢钾（KH2PO4）0．3g

磷酸氢二钠（Na2HPO4）0．2g

蒸馏水加至1000．0ml

配好后用磷酸盐溶液校正pH，如无缓冲液可用新鲜蒸馏水代替。

（3）操作

①用蜡笔在血膜两头划线，以防染液溢出，然后将血膜平放在染色架上。

②用瑞氏染液3～5滴覆盖整个血膜，固定细胞0．5～1分钟。

③滴加等量或稍多的缓冲液，用吸球将其与染液吹匀，或者摇动玻片染色5～10分钟。

④慢慢摇动玻片，然后用流动水从玻片的一侧冲去染液，待血片自然干燥后（或用滤纸吸干），即可镜检。

2．姬姆萨染色法（Giemsastaining）

（1）原理姬姆萨染料由天青、伊红组成，其染色原理与瑞氏染色法基本相同，但姬姆萨染色

法对细胞核着色较好，结构显示更清晰，而对胞浆和中性颗粒则染色较差。

（2）试剂

姬姆萨（Giemsa）染料1．0g甘油66．0ml甲醇66．0ml

将1．0g姬姆萨染料粉末全部倒入盛有66．0ml甘油的圆锥烧瓶内，在56℃的水浴锅上加热90～120分钟，使染料与甘油充分混匀溶解，然后加入60℃预热的甲醇，充分摇匀后置棕色瓶中，于室温下7天，过滤后才能使用。此种染液放置时间愈久，细胞着色越佳。

（3）操作

①。将干燥血片用甲醇固定3～5分钟。

②。将固定的血片置于被pH6．4～6．8磷酸盐缓冲液（同瑞氏染色）稀释10～20倍的姬姆萨染液中，浸染10～30分钟（标本较少可用滴染法）。

③。取出用水冲洗，待干后镜检。

3．瑞氏姬姆萨混合一次染色法

I液：取瑞氏染粉1g、姬姆萨染粉0．3g，置洁净研钵中，加少量甲醇（分析纯）研磨片刻，吸出上层染液。再加少量甲醇，继续研磨，再吸出上液。如此连续几次，共用甲醇500ml，收集于棕色瓶中，每天早、晚各振摇3分钟，共5天，以后存放1周即能使用。

Ⅱ液：pH6．4～6．8磷酸盐缓冲液

磷酸二氢钾（无水）6．64g磷酸氢二钾（无水）2．56g加少量蒸馏水溶解，用磷酸盐调整pH，加水至1000ml.

操作平置玻片于染色架上，滴加染液3～5滴，使其迅速盖满血膜，约1分钟后，滴加缓冲液5～10滴，轻轻摇动玻片或对准血片吹气，与染液充分混合，5～10分钟后用水冲去染液，待干医`学教育网搜集整理。

四．血涂片的质量控制

1．血膜片的质量要求是厚薄均匀适度，低倍镜下观察全片，细胞不重叠，头尾及两侧有一定的空隙，血膜头部有明确的病人标志。

2．些体积较大的特殊细胞常在血膜的尾部出现，因此蜡笔划线时应注意保存血膜尾部细胞，血膜必须充分干燥，否则在染色过程中容易脱落。

3．配制染料须用优质甲醇，稀释染液用缓冲液，因为缓冲液的pH对细胞染色的影响很重要。在偏酸性环境中正电荷增多，在偏碱性环境中负电荷增多，又因为细胞着色对氢离子浓度十分敏感。如果染色偏碱，原是紫红色的中性颗粒则染成深蓝色，造成识别困难。冲洗须用中性水，虽亦可用自来水（但不能保持稳定）。

4．对所用染液应进行预染试验，新配制的染液放置一段时间后其中的美蓝逐渐氧化成天青B，天青B对细胞核的着色效果比美蓝好，因此，瑞氏染液放置时间越长染色效果越好，临床上称之为成熟。判断染液成熟程度的简易方法是用正常优质血片做预染试验，先用低倍镜观察载有染液的血片，认为着色满意后，再按照染色后冲洗顺序最后用油镜镜检，这样不仅可了解染液的成熟程度，而且还可以选择合适的染色时间，供临床标本染色时参考。

5．染液与缓冲液的比例要适当，以1∶27为宜。一般说来缓冲液稀释度愈大，染色时间愈长，细胞着色愈匀称、鲜艳。缓冲液和染液量要充足，否则染液很快蒸发，染料沉淀于细胞上，使细胞深染而无法检查。细胞较多较厚的涂片（如红细胞增多症）染液应多些。细胞较少的涂片染液应少些。

6．染色时间与染液浓度、室温高低、细胞多少有关，染液愈淡，室温越低，细胞愈多，所需时间越长，应适当增加染液浓度，因此必须根据情况灵活掌握。

7．染色良好的血膜片，外观呈浅红色，红细胞呈粉红色，白细胞核呈暗紫红色，染色质结构能辨，粒细胞的颗粒呈固有种异颜色。